Description du produit
YEX-L1-BOD : six essais DBO par différence de pression en parallèle sous incubation contrôlée
- Large plage : 0–4000 mg/L avec huit volumes prescrits de 500 à 25 mL ; de nombreux échantillons inférieurs à 4000 mg/L se testent sans dilution si la plage est bien choisie.
- Six positions indépendantes : Six flacons ambrés étanches de 580 mL, six terminaux de pression et une agitation magnétique continue permettent jusqu’à six essais simultanés.
- Contrôle qualité lié à la méthode : Durée 1–30 jours, DBO5 à 20 ± 1 °C, données intermédiaires et finales locales et contrôle glucose-acide glutamique avec résultat attendu de 180–230 mg/L.
Présentation du produit
YexSensor YEX-L1-BOD est un analyseur respirométrique numérique destiné aux laboratoires qui évaluent la charge organique, les performances de traitement, la biodégradabilité ou les évolutions de procédé. Dans la méthode en flacon fermé, les microorganismes consomment l’oxygène dissous, l’oxygène de l’espace de tête réapprovisionne le liquide, le CO2 produit est absorbé par l’hydroxyde de sodium et le terminal convertit la baisse de pression en DBO.
Le système traite jusqu’à six échantillons pendant 1–30 jours. Pour la DBO5, la durée est de cinq jours et l’ensemble d’agitation reste dans l’obscurité à 20 ± 1 °C dans une enceinte thermostatée. Chaque flacon possède son terminal pour régler volume, durée, délai thermique, numéro, heure et luminosité. Les valeurs intermédiaires sont enregistrées pendant l’essai et le résultat final est sauvegardé automatiquement.
Critères de sélection et limites de méthode
L’analyseur ne remplace ni l’incubateur ni la maîtrise de la méthode
L’incubateur thermostaté n’est pas fourni en standard. Le laboratoire doit disposer d’une enceinte sombre maintenant l’ensemble à 20 ± 1 °C. Les variations thermiques modifient la pression. Blancs, corrections de dilution et d’ensemencement, répétitions, inhibiteurs, limites d’acceptation, réactifs et rapports restent régis par la méthode DBO applicable.
La plage dépend du volume exact
Le terminal convertit la pression selon le volume sélectionné, qui doit correspondre au volume réel du flacon. Utiliser le plus grand volume dont la plage ne sera pas dépassée. Un dépassement impose de recommencer avec une aliquote plus petite ou une dilution validée ; au-delà de 4000 mg/L, la dilution est nécessaire.
La biologie et les interférences doivent être évaluées
pH, chlore, métaux toxiques, salinité, population microbienne, algues, particules, nitrification, congélation et prétraitement influencent la demande mesurée. Neutralisation, déchloration, dilution, homogénéisation, nutriments, tampon, ensemencement, filtration ou inhibiteur peuvent être nécessaires et doivent être définis avant commande.
Principaux avantages techniques
Six échantillons en parallèle
Six terminaux indépendants exécutent différents échantillons ou réplicats sur une base. Les numéros distinguent les positions. Les flacons ambrés limitent la lumière et l’agitation continue favorise le transfert d’oxygène. On peut traiter séries, doubles, comparaisons ensemencées, inhibiteurs ou contrôles GGA.
Surveillance numérique directe de la pression
Chaque terminal mesure la pression, applique le facteur du volume, affiche la DBO et mémorise les données. Quatre touches donnent accès au volume, jours, délai, numéro, heure, données détaillées et historique. La veille automatique économise la pile et le terminal peut être réveillé pendant l’essai.
Huit combinaisons plage-volume
Les aliquotes couvrent 0–20, 0–40, 0–80, 0–160, 0–320, 0–800, 0–2000 et 0–4000 mg/L. La concentration prévue correspond ainsi à un volume défini. À défaut d’une meilleure estimation, environ 60 % de la DCOCr peut servir d’estimation initiale de DBO, à confirmer par la méthode.
Vérification du procédé par GGA
Le glucose et l’acide glutamique contrôlent l’ensemble instrument-méthode. Une solution ensemencée de 1 L contenant 150 mg de chaque composé est testée en parallèle sur toute la procédure DBO5. La moyenne attendue est 180–230 mg/L. Un écart impose de vérifier eau de dilution, semence, température, réactifs, joints, volume et réglages.
Caractéristiques techniques
| Paramètre | Spécification |
|---|---|
| Modèle | YEX-L1-BOD |
| Plage de mesure | 0–4000 mg/L |
| Contrôle d’exactitude | Conforme au contrôle DBO5 glucose-acide glutamique ; résultat attendu 180–230 mg/L |
| Durée d’essai | 1–30 jours |
| Nombre d’échantillons | Jusqu’à 6 |
| Conservation des données | Résultats DBO5 jusqu’à 10 ans |
| Volume du flacon | 580 mL |
| Température d’incubation | 20 ± 1 °C |
| Alimentation | 110–220 V CA, 50/60 Hz |
| Puissance nominale | 10 W |
| Dimensions de l’unité principale | 272 × 185 × 81,5 mm |
| Poids de l’unité principale | 2,4 kg |
| Pile du terminal | Pile lithium CR123 3 V |
| Méthode de mesure | Différence de pression en flacon fermé avec absorption du CO2 |
Choix de la plage et du volume d’échantillon
| Plage | DBO attendue | Volume d’échantillon |
|---|---|---|
| 1 | 0–20 mg/L | 500 mL |
| 2 | 0–40 mg/L | 450 mL |
| 3 | 0–80 mg/L | 400 mL |
| 4 | 0–160 mg/L | 300 mL |
| 5 | 0–320 mg/L | 200 mL |
| 6 | 0–800 mg/L | 100 mL |
| 7 | 0–2000 mg/L | 50 mL |
| 8 | 0–4000 mg/L | 25 mL |
Applications
Traitement des eaux usées municipales
Évalue entrée, étapes biologiques, clarification et rejet final. Les positions parallèles acceptent routine, réplicats, contrôles ensemencés ou essais avec et sans inhibiteur. Les effluents chlorés ou riches en nitrifiants exigent le prétraitement prévu.
Laboratoires d’eaux usées industrielles
Évalue biodégradabilité et réponse au traitement dans l’agroalimentaire, la pharmacie, la chimie, le papier ou le textile. Métaux toxiques, cyanure, pH extrême, chlore ou DBO supérieure à 4000 mg/L peuvent nécessiter neutralisation, déchloration, ensemencement, dilution ou vérification.
Laboratoires environnementaux et publics
Réalise des études contrôlées d’eaux de surface, effluents et projets. L’historique sert à revoir les résultats finaux et le dernier jeu détaillé aide à interpréter la courbe. Les rapports réglementaires suivent la méthode et le plan qualité locaux.
Recherche, enseignement et développement de méthodes
La durée 1–30 jours permet d’étudier l’évolution de la demande, la biodégradation, l’ensemencement ou l’inhibition. Les positions comparent les traitements et le contrôle GGA fournit une référence de formation et de validation.
Laboratoires prestataires et séries
Six terminaux partagent une plateforme thermostatée. Pour chaque position, consigner flacon, terminal, aliquote, plage, pH, dilution, semence, inhibiteur, heures, lots de réactifs, température, opérateur et écarts.
Installation et procédure standard
Installer l’ensemble dans une enceinte sombre stable à 20 ± 1 °C, avec assez d’espace pour la base, les flacons, terminaux, câble et circulation d’air sans pression sur les têtes. Utiliser l’adaptateur 15 V CC / 2 A et un secteur 110–220 V CA, 50/60 Hz stable. Analyseur, terminaux, câbles et accessoires ne sont pas étanches ; les protéger de la condensation, des projections et de l’immersion.
Amener l’échantillon à 20 ± 1 °C, contrôler le pH, choisir la plage et transférer l’aliquote exacte dans un flacon propre et sec. Introduire doucement le barreau puis agiter et aérer le flacon ouvert une heure à 20 °C. Placer 3–5 pastilles de NaOH, environ 0,5 g, dans la coupelle sans contaminer l’échantillon. Monter coupelle et terminal, serrer, régler volume et durée, démarrer et vérifier l’agitation.
Prétraitement des échantillons spéciaux et maîtrise de la méthode
| État de l’échantillon | Contrôle indiqué dans le manuel | Note d’achat ou de méthode |
|---|---|---|
| Effluent acide ou alcalin | Ajuster échantillon ou dilution à pH 6–8 ; échantillon courant à pH 6,7–7,5, de préférence 7,2 | pH-mètre recommandé et ajout consigné |
| Chlore libre ou combiné | Laisser un faible résiduel se dissiper 1–2 h ou appliquer une méthode validée au sulfite de sodium | Confirmer la déchloration sans surdosage |
| Particules, forte dilution ou échantillon congelé | Homogénéiser soigneusement avant prélèvement | Documenter et assurer la représentativité |
| Forte teneur en algues | Pour une meilleure exactitude, filtrer à 1,6 µm et indiquer la porosité | Seulement si la méthode l’autorise |
| Conductivité inférieure à 125 µS/cm | Ajouter nutriments et tampon pour dépasser 125 µS/cm | Confirmer préparation et volumes |
| DBO prévue supérieure à 4000 mg/L ou toxiques | Diluer avec une eau ensemencée correctement préparée | Noter le facteur et corriger |
| Microorganismes insuffisants | Ajouter une semence correspondant à environ 2 % du volume total | Appliquer la correction prescrite |
| Nitrification | Ajouter 2 mL/L d’allylthiourée à 1,0 g/L pour distinguer demandes carbonée et azotée | Consigner l’inhibiteur |
Vérification de l’exactitude et entretien
Vérifier le procédé DBO5 avec GGA. Sécher glucose et acide glutamique à 130 °C pendant une heure, peser 150 mg de chacun, dissoudre dans l’eau de dilution ensemencée et compléter à 1 L. Tester en parallèle ; la moyenne doit être 180–230 mg/L. Sinon contrôler température, eau, semence, réactifs, joints, volume, réglages et manipulation.
Après chaque essai, vider et rincer les flacons, laver à l’eau savonneuse tiède avec une brosse, éliminer tout détergent, rincer à l’eau distillée ou déionisée et sécher à l’air. Les flacons de 580 mL ne sont pas traités thermiquement et ne doivent pas passer à l’étuve. Nettoyer barreaux et coupelles ; ne pas laver ni immerger les terminaux. Utiliser des piles CR123 3 V approuvées et les recycler.
Configuration et données pour devis
Pour le devis, fournir matrices, DBO minimale et maximale, méthode, nombre par lot, charge, durée, capacité d’incubation, pH, chlore, toxicité, salinité, semence, dilution et nitrification. Préciser si seule la DBO5 ou aussi des études longues, contrôles et flacons ou terminaux supplémentaires sont requis.
L’offre doit préciser base, terminaux, flacons, support, barreaux, coupelles, adaptateur, outils, pH, standards, nutriments, tampon, NaOH, inoculum, piles, consommables, prise, langue, destination et réception. Si une impression est exigée, définir la sortie et confirmer la configuration dans la commande, car le manuel ne définit ni interface standard ni imprimante dans le colis.
Liste de colisage standard
| Catégorie | Article | Quantité | Préparation ou usage |
|---|---|---|---|
| Matériel | Terminal DBO | 6 pièces | Pression, affichage, réglages et données |
| Matériel | Base d’agitation six positions | 1 unité | Agitation magnétique continue |
| Matériel | Flacon DBO ambré 580 mL | 6 pièces | Incubation fermée |
| Matériel | Support de flacons | 1 pièce | Préparation et manipulation |
| Matériel | Barreau magnétique | 6 pièces | Mélange |
| Matériel | Coupelle absorbante | 6 pièces | Contient le NaOH au-dessus de l’échantillon |
| Matériel | Adaptateur 15 V CC / 2 A | 1 pièce | Alimente la base |
| Accessoire | Pince en plastique | 1 pièce | Transfère les pastilles de NaOH |
| Accessoire | Papier pH précis 6,7–7,5 | 1 paquet | Contrôle courant ; pH-mètre recommandé |
| Document | Guide rapide | 1 exemplaire | Référence initiale |
| Document | Manuel utilisateur | 1 exemplaire | Fonctionnement, sécurité et méthode |
| Document | Certificat et carte de garantie | 1 jeu | Réception et service |
| Réactif | Kit étalon 210 mg/L | 1 jeu | Diluer à 1 L avec eau purifiée |
| Réactif | Sels nutritifs | 1 jeu | Dissoudre dans 300 mL d’eau purifiée |
| Réactif | Tampon | 1 jeu | Dissoudre dans 100 mL d’eau purifiée |
| Réactif | Pastilles d’hydroxyde de sodium | 10 g | Absorbant CO2 et solution d’ajustement du pH |
| Réactif | Inoculum | 2 g | Par lot, dissoudre 0,2 g dans 100 mL et utiliser le surnageant |
La commande et le bordereau confirmés régissent la livraison. Contrôler verrerie et réactifs dès réception. Incubateur, verrerie de laboratoire, thermomètre, pipetage, pissette, brosse et équipement de préparation de l’eau de dilution sont fournis par l’utilisateur sauf mention dans l’offre.
Assurance qualité et service après-vente
Chaque analyseur est contrôlé avant expédition. Sauf accord différent, la garantie standard est d’un an après achat, puis un entretien payant reste disponible. Sont exclus : installation ou usage incorrect, environnement inadapté, erreur humaine, accident, stockage ou transport inadéquat, force majeure, ouverture ou modification non autorisée, réparation non agréée, scellé rompu, consommables non approuvés ou canal non autorisé.
Piles, réactifs, flacons, joints et consommables ou pièces d’usure sont exclus sauf défaut de fabrication confirmé. Conserver garantie, preuve d’achat, numéro de série et emballage. Pour l’assistance, fournir modèle, terminal, date, incubation, contexte de l’échantillon et des réactifs, description, photos ou vidéos.
Questions fréquentes
1. Quel principe utilise le YEX-L1-BOD ?
Il utilise la différence de pression en flacon fermé avec absorption du CO2. Les microorganismes consomment l’oxygène, l’espace de tête réapprovisionne le liquide, le NaOH absorbe le CO2 et le terminal convertit la baisse en DBO. La validité exige préparation, étanchéité, agitation, température et qualité correctes.
2. Quelles plage et capacité sont disponibles ?
La plage est 0–4000 mg/L avec huit volumes et jusqu’à six échantillons simultanés. Choisir 500, 450, 400, 300, 200, 100, 50 ou 25 mL selon la concentration et saisir exactement ce volume. Au-dessus de 4000 mg/L, une dilution validée est requise.
3. S’agit-il d’un analyseur direct de DBO5 ?
Le système exécute un essai programmé et affiche la DBO issue de la pression pendant l’incubation. Pour DBO5, régler cinq jours à 20 ± 1 °C dans l’obscurité. La validité dépend aussi de la méthode, préparation, blancs, semence, dilution, corrections, réplicats et critères.
4. Comment vérifier l’exactitude ?
Le manuel impose le contrôle glucose-acide glutamique. Préparer un étalon GGA ensemencé, tester des parallèles cinq jours et calculer la moyenne, attendue à 180–230 mg/L. En cas d’écart, contrôler température, semence, eau, réactifs, joints, volume, réglages et manipulation.
5. L’incubateur est-il inclus ?
Non. Le laboratoire fournit un incubateur sombre accueillant le système à 20 ± 1 °C. Vérifier dimensions, passage du câble, uniformité, récupération après ouverture et surveillance. La verrerie et le matériel de préparation courants sont aussi fournis par l’utilisateur sauf offre distincte.
6. Comment les données sont-elles conservées ?
Le terminal enregistre les données intermédiaires et le résultat final. Seul le dernier jeu détaillé reste disponible, tandis que les résultats DBO5 peuvent être conservés dix ans. La suppression est irréversible ; consigner les données nécessaires avant. Le manuel ne précise pas d’interface numérique standard.
7. Quels échantillons nécessitent un prétraitement ?
Évaluer eaux industrielles, effluents chlorés, plus de 4000 mg/L, matrices toxiques, effluents nitrifiants, faible conductivité, algues, particules, congélation ou faible biomasse. Les contrôles peuvent inclure neutralisation, déchloration, homogénéisation, filtration, nutriments, tampon, dilution, semence ou allylthiourée.
8. Quelles données fournir pour un devis ?
Fournir matrices, plage, méthode, durée, taille du lot, charge, incubateur, pH, chlore, dilution, semence, nitrification, consommation de réactifs, flacons ou terminaux en plus, prise, langue, destination et réception. YexSensor confirmera matériel, réactifs, consommables et colisage.
Résumé
YEX-L1-BOD convient aux laboratoires nécessitant six mesures respirométriques parallèles de 0–4000 mg/L, 1–30 jours, facteurs de volume définis, données sur terminal et contrôle GGA. Les limites sont claires : incubateur sombre séparé à 20 ± 1 °C, biologie et prétraitement corrects, flacons étanches, agitation continue et contrôle DBO complet restent indispensables.
Pour une proposition adaptée, transmettez à YexSensor types d’échantillons, plage, méthode, lot, durée, incubation, prétraitement, plan de réactifs, pièces, destination et réception. Ces données confirment stratégie de plage, nombre de flacons et terminaux, réactifs, équipements utilisateur, colisage et mise en service avant expédition.
