Produktbeschreibung
YEX-L1-BOD: sechs Druckdifferenz-BSB-Tests parallel unter kontrollierten Inkubationsbedingungen
- Weiter Arbeitsbereich: 0–4000 mg/L mit acht festgelegten Probenvolumina von 500 mL bis 25 mL; bei richtiger Bereichswahl lassen sich viele Proben unter 4000 mg/L ohne Verdünnung prüfen.
- Sechs unabhängige Messplätze: Sechs geschlossene braune 580-mL-Kulturflaschen, sechs druckmessende Terminals und kontinuierliches Magnetrühren ermöglichen bis zu sechs gleichzeitige Tests.
- Methodenorientierte Qualitätssicherung: Prüfdauer 1–30 Tage, BSB5 bei 20 ± 1 °C, lokale Zwischen- und Enddaten sowie eine Glucose-Glutaminsäure-Kontrolle mit einem erwarteten Ergebnis von 180–230 mg/L.
Produktübersicht
YexSensor YEX-L1-BOD ist ein digitaler respirometrischer BSB-Analysator für Labore, die organische Belastung, Reinigungsleistung, biologische Abbaubarkeit oder Prozessänderungen bewerten. Beim geschlossenen Druckdifferenzverfahren verbrauchen Mikroorganismen gelösten Sauerstoff, Sauerstoff aus dem Kopfraum ergänzt die Flüssigphase, entstehendes Kohlendioxid wird von Natriumhydroxid gebunden und das Terminal rechnet den Druckabfall in einen BSB-Wert um.
Bis zu sechs Proben können gleichzeitig über 1–30 Tage geprüft werden. Für BSB5 wird eine Dauer von fünf Tagen eingestellt; das vollständige Rührsystem bleibt dunkel bei 20 ± 1 °C im temperierten Inkubator. Jedes Gefäß besitzt ein eigenes Terminal für Probenvolumen, Prüfdauer, Temperaturverzögerung, Terminalnummer, Zeit und Helligkeit. Während des Tests werden Zwischenwerte gespeichert, am Ende stoppt das Terminal automatisch und sichert das Endergebnis.
Auswahlkriterien und methodische Grenzen
Das Gerät ersetzt weder Inkubator noch Methodenführung
Ein temperierter Inkubator gehört nicht zum Standardlieferumfang. Das Labor benötigt einen dunklen Inkubator, der das komplette Sechsfach-Rührsystem bei 20 ± 1 °C hält. Temperaturschwankungen verändern den Kopfraumdruck. Blindwerte, Verdünnungs- und Impfkorrekturen, Doppelbestimmungen, Inhibitoren, Akzeptanzgrenzen, Reagenzienkontrolle und Berichterstattung richten sich weiterhin nach der geltenden BSB-Methode.
Der Messbereich hängt vom exakten Probenvolumen ab
Das Terminal rechnet die Druckänderung mit dem gewählten Volumenfaktor um. Eingestelltes und tatsächlich eingefülltes Volumen müssen übereinstimmen. Zur Fehlerreduzierung wird das größte Volumen gewählt, dessen Bereich voraussichtlich nicht überschritten wird. Bei Überschreitung ist ein neuer Test mit kleinerem Aliquot oder validierter Verdünnung nötig; über 4000 mg/L muss verdünnt werden.
Biologie und Störeinflüsse der Probe sind zu bewerten
pH, Chlor, toxische Metalle, Salzgehalt, Mikroorganismen, Algen, Partikel, Nitrifikation, Einfrieren und Vorbehandlung beeinflussen den Sauerstoffbedarf. Je nach Probe sind Neutralisation, Entchlorung, Verdünnung, Homogenisierung, Nährstoffe, Puffer, Impfung, Filtration oder Nitrifikationshemmer erforderlich und vor der Bestellung methodisch festzulegen.
Wesentliche technische Vorteile
Sechs Proben parallel
Sechs unabhängige Terminals ermöglichen unterschiedliche Proben oder Replikate auf einer Rührbasis. Eindeutige Nummern kennzeichnen die Positionen. Braune 580-mL-Flaschen begrenzen Lichteinfluss, kontinuierliches Rühren unterstützt den Sauerstoffübergang. Möglich sind Probenserien, Doppelbestimmungen, geimpfte und ungeimpfte Vergleiche, Inhibitorkontrollen oder GGA-Prüfungen.
Direkte digitale Drucküberwachung
Jedes Terminal misst die Druckänderung, verwendet den Faktor des gewählten Volumens, zeigt den aktuellen BSB an und speichert Daten. Über vier Tasten sind Volumen, Tage, Temperaturverzögerung, Nummer, Uhrzeit, Detaildaten und Verlauf zugänglich. Der automatische Schlafmodus schont die Batterie; während des Tests kann das Terminal jederzeit geweckt werden.
Acht Bereichs- und Volumenkombinationen
Vorgegebene Aliquote decken 0–20, 0–40, 0–80, 0–160, 0–320, 0–800, 0–2000 und 0–4000 mg/L ab. Damit wird die erwartete Konzentration einem klaren Volumen zugeordnet. Fehlt eine bessere Schätzung, können etwa 60% des CODCr als erste BSB-Näherung dienen, die anschließend methodisch bestätigt wird.
Prozessprüfung mit GGA-Standard
Glucose und Glutaminsäure prüfen Gerät und Gesamtverfahren. Nach der Anleitung wird eine geimpfte 1-L-Standardlösung mit je 150 mg hergestellt und parallel über den vollständigen BSB5-Ablauf getestet. Der Mittelwert soll 180–230 mg/L betragen. Abweichungen erfordern die Prüfung von Verdünnungswasser, Impfung, Temperatur, Reagenzien, Dichtungen, Volumen und Einstellungen.
Technische Daten
| Parameter | Spezifikation |
|---|---|
| Modell | YEX-L1-BOD |
| Messbereich | 0–4000 mg/L |
| Genauigkeitskontrolle | Erfüllt die BSB5-Kontrolle mit Glucose-Glutaminsäure; erwartetes Ergebnis 180–230 mg/L |
| Prüfdauer | 1–30 Tage |
| Probenzahl | Bis zu 6 |
| Datenspeicherung | BSB5-Ergebnisdaten bis zu 10 Jahre |
| Kulturflaschenvolumen | 580 mL |
| Inkubationstemperatur | 20 ± 1 °C |
| Stromversorgung | 110–220 V AC, 50/60 Hz |
| Nennleistung | 10 W |
| Abmessungen der Haupteinheit | 272 × 185 × 81,5 mm |
| Gewicht der Haupteinheit | 2,4 kg |
| Terminalbatterie | CR123 3 V Lithiumbatterie |
| Messverfahren | Druckdifferenz im geschlossenen Gefäß mit Kohlendioxidabsorption |
Bereichs- und Probenvolumenwahl
| Bereich | Erwartete BSB-Konzentration | Probenvolumen |
|---|---|---|
| 1 | 0–20 mg/L | 500 mL |
| 2 | 0–40 mg/L | 450 mL |
| 3 | 0–80 mg/L | 400 mL |
| 4 | 0–160 mg/L | 300 mL |
| 5 | 0–320 mg/L | 200 mL |
| 6 | 0–800 mg/L | 100 mL |
| 7 | 0–2000 mg/L | 50 mL |
| 8 | 0–4000 mg/L | 25 mL |
Anwendungen
Kommunale Abwasserbehandlung
Bewertung von Zulauf, biologischen Stufen, Nachklärung und Ablauf hinsichtlich organischer Belastung und Leistung. Parallelplätze unterstützen Routineproben, Replikate, Impfansätze sowie Vergleiche mit und ohne Inhibitor. Chlorierte Abläufe und nitrifikantenreiche biologische Abläufe benötigen die festgelegte Vorbehandlung.
Industrielle Abwasserlabore
Bewertung der biologischen Abbaubarkeit und Behandlungswirkung in Lebensmittel-, Getränke-, Pharma-, Chemie-, Papier- oder Textilabwässern. Toxische Metalle, Cyanid, extreme pH-Werte, Chlor oder Werte über 4000 mg/L können Neutralisation, Entchlorung, Impfung, Verdünnung oder zusätzliche Verifizierung erfordern.
Umwelt- und öffentliche Labore
Kontrollierte BSB-Untersuchungen von Oberflächenwasser, Ablauf und Projektproben. Historien dienen der Prüfung von Endwerten; der letzte Detaildatensatz hilft bei Kurvenbewertung und Fehleranalyse. Behördliche Berichte folgen weiterhin der lokal anerkannten Methode und dem Qualitätsplan.
Forschung, Lehre und Methodenentwicklung
Die einstellbare Dauer 1–30 Tage unterstützt Studien zu Sauerstoffbedarf, biologischem Abbau, Impfung oder Hemmung. Mehrere Positionen ermöglichen Behandlungsvergleiche; die GGA-Kontrolle bietet eine Prozessreferenz für Schulung und Methodenprüfung.
Auftragslabore und Serienbetrieb
Sechs unabhängige Terminals teilen eine temperierte Rührplattform. Für jede Position sollten Flaschen- und Terminalnummer, Aliquot, Bereich, pH-Anpassung, Verdünnung, Impfung, Inhibitor, Start und Ende, Reagenzchargen, Temperatur, Bediener und Abweichungen dokumentiert werden.
Installation und Standardablauf
Das komplette Rührsystem kommt in einen dunklen, auf 20 ± 1 °C geregelten Inkubator. Er muss Basis, montierte Flaschen, Terminals, Netzteilkabel und Luftzirkulation aufnehmen, ohne Druck auf die Terminals. Die Basis verwendet das mitgelieferte 15 V DC / 2 A Netzteil an 110–220 V AC, 50/60 Hz. Gerät, Terminals, Kabel und Zubehör sind nicht wasserdicht und vor Kondensation, Spritzern und Eintauchen zu schützen.
Probe auf 20 ± 1 °C bringen, pH prüfen, Bereich wählen und das exakte Aliquot in eine saubere trockene Flasche geben. Einen sauberen Rührstab vorsichtig einsetzen und die offene Flasche im 20-°C-Inkubator eine Stunde rühren und belüften. Etwa 3–5 Natriumhydroxidpellets, ungefähr 0,5 g, in den Absorberbecher geben, ohne die Probe zu kontaminieren. Becher und Terminal dicht montieren, Volumen und Dauer einstellen, Test starten und Rühren kontrollieren.
Vorbehandlung besonderer Proben und Methodenkontrolle
| Probenzustand | Vorgabe der Anleitung | Hinweis für Beschaffung oder Methode |
|---|---|---|
| Saures oder alkalisches Abwasser | Probe oder Verdünnung auf pH 6–8 einstellen; Routineproben auf pH 6,7–7,5, bevorzugt 7,2 | pH-Meter empfohlen; Säure- oder Laugenzugabe dokumentieren |
| Freies oder gebundenes Chlor | Geringen freien Chlorgehalt 1–2 Stunden entweichen lassen oder ein validiertes Natriumsulfitverfahren anwenden | Vollständige Entchlorung ohne Überdosierung bestätigen |
| Viele Partikel, starke Verdünnung oder eingefrorene Probe | Vor der Aliquotierung gründlich homogenisieren | Vorbereitung dokumentieren und Repräsentativität sichern |
| Hoher Algengehalt | Bei höherem Genauigkeitsbedarf über 1,6-µm-Membran filtern und Porengröße berichten | Nur anwenden, wenn die maßgebende Methode dies zulässt |
| Leitfähigkeit unter 125 µS/cm | Nährstoff- und Pufferlösung zugeben, bis die Leitfähigkeit über 125 µS/cm liegt | Herstellung und Zugabevolumen bestätigen |
| Erwarteter BSB über 4000 mg/L oder toxische Stoffe | Mit korrekt hergestelltem geimpftem Verdünnungswasser in einen geeigneten Bereich verdünnen | Verdünnungsfaktor dokumentieren und korrigieren |
| Zu wenige Mikroorganismen | Impflösung in Höhe von ungefähr 2% des Gesamtprobenvolumens zugeben | Methodisch vorgeschriebene Impfkorrektur anwenden |
| Nitrifikationsstörung | Zur Trennung von Kohlenstoff- und Stickstoffbedarf 2 mL/L einer 1,0-g/L-Allylthioharnstofflösung zugeben | Inhibitor im Prüfbericht dokumentieren |
Genauigkeitsprüfung und Wartung
Das vollständige BSB5-Verfahren mit Glucose-Glutaminsäure prüfen. Glucose und Glutaminsäure eine Stunde bei 130 °C trocknen, jeweils 150 mg einwiegen, in geimpftem Verdünnungswasser lösen und auf 1 L auffüllen. Parallelen testen; der Mittelwert soll 180–230 mg/L betragen. Bei Abweichung Temperatur, Wasser, Impfung, Reagenzien, Dichtungen, Volumen, Einstellungen und Handhabung prüfen.
Flaschen nach jedem Test sicher entleeren, mit warmem Seifenwasser und Bürste reinigen, alle Reinigungsmittel entfernen, mit destilliertem oder deionisiertem Wasser nachspülen und an der Luft trocknen. Die 580-mL-Flaschen sind nicht wärmebehandelt und dürfen nicht im Ofen getrocknet werden. Rührstäbe und Absorberbecher reinigen; elektronische Terminals nicht waschen oder eintauchen. Nur zugelassene CR123-3-V-Batterien verwenden und fachgerecht entsorgen.
Konfiguration und Angebotsdaten
Für ein vollständiges Angebot Probenmatrices, minimalen und maximalen BSB, Methode, Probenzahl je Charge, Arbeitslast, Testdauer, Inkubatorkapazität, pH, Chlor, Toxizität, Salzgehalt, Impfung, Verdünnung und Nitrifikation angeben. Klären, ob nur BSB5 oder auch längere kinetische Tests, Kontrollen sowie zusätzliche Flaschen oder Terminals benötigt werden.
Das Angebot sollte Basis, Terminals, Flaschen, Gestell, Rührstäbe, Absorberbecher, Netzteil, Werkzeuge, pH-Kontrolle, Standards, Nährsalze, Puffer, Natriumhydroxid, Inokulum, Ersatzbatterien, Verbrauchsmengen, Stecker, Sprache, Zielort und Abnahme aufführen. Wird eine Druckausgabe benötigt, muss sie konkret spezifiziert und im Auftrag bestätigt werden, da die Anleitung keine Standardschnittstelle und keinen Drucker im Lieferumfang nennt.
Standardlieferumfang
| Kategorie | Artikel | Menge | Vorbereitung oder Verwendung |
|---|---|---|---|
| Hardware | BSB-Terminalkopf | 6 Stk. | Druckmessung, Anzeige, Einstellungen und Datenspeicherung |
| Hardware | Sechsfach-Rührbasis | 1 Einheit | Kontinuierliches Magnetrühren während der Inkubation |
| Hardware | Braune 580-mL-BSB-Kulturflasche | 6 Stk. | Geschlossenes Inkubationsgefäß |
| Hardware | Kulturflaschengestell | 1 Stk. | Vorbereitung und Handhabung der Flaschen |
| Hardware | Magnetrührstab | 6 Stk. | Mischen der Probe |
| Hardware | Absorberbecher | 6 Stk. | Hält Natriumhydroxid oberhalb der Probe |
| Hardware | 15 V DC / 2 A Netzteil | 1 Stk. | Versorgt die Rührbasis |
| Zubehör | Kunststoffpinzette | 1 Stk. | Überträgt Natriumhydroxidpellets |
| Zubehör | Präzisions-pH-Papier, pH 6,7–7,5 | 1 Packung | Routine-pH-Prüfung; pH-Meter zur Einstellung empfohlen |
| Dokument | Kurzanleitung | 1 Exemplar | Erste Ablaufreferenz |
| Dokument | Benutzerhandbuch | 1 Exemplar | Bedienung, Sicherheit und Methodenhinweise |
| Dokument | Zertifikat und Garantiekarte | 1 Satz | Abnahme- und Servicenachweis |
| Reagenz | 210-mg/L-Standardlösungssatz | 1 Satz | Nach Anleitung mit Reinwasser auf 1 L verdünnen |
| Reagenz | Nährsalze | 1 Satz | In 300 mL Reinwasser lösen |
| Reagenz | Puffer | 1 Satz | In 100 mL Reinwasser lösen |
| Reagenz | Natriumhydroxidpellets | 10 g | CO2-Absorber und Herstellung der pH-Einstelllösung |
| Reagenz | Inokulum | 2 g | Je Ansatz 0,2 g in 100 mL Reinwasser lösen und Überstand verwenden |
Maßgeblich sind der bestätigte Auftrag und Packzettel. Glaswaren und Reagenzien sofort nach Empfang prüfen. Temperierter Inkubator, Laborgeräte aus Glas, Thermometer, Pipettiermittel, Spritzflasche, Flaschenbürste und Ausrüstung zur Herstellung von Verdünnungswasser werden vom Nutzer gestellt, sofern sie nicht separat angeboten sind.
Qualitätssicherung und Kundendienst
Jeder Analysator wird vor Auslieferung geprüft. Sofern der Vertrag nichts anderes bestimmt, beträgt die Standardgarantie ein Jahr ab Kaufdatum; danach ist kostenpflichtiger Service verfügbar. Ausgenommen sind fehlerhafte Installation oder Nutzung, ungeeignete Umgebung, Bedienfehler, Unfälle, falsche Lagerung oder Beförderung, höhere Gewalt, unbefugtes Öffnen oder Ändern, nicht autorisierte Reparatur, beschädigte Siegel, Schäden durch nicht freigegebene Verbrauchsmittel und nicht autorisierte Bezugsquellen.
Batterien, Reagenzien, Glasflaschen, Dichtungen und andere Verbrauchs- oder Verschleißteile sind nur bei bestätigtem Herstellungsfehler kostenlos abgedeckt. Garantiekarte, Kaufbeleg, Seriennummer und Originalverpackung aufbewahren. Für Support Modell, Terminalnummer, Kaufdatum, Inkubationsbedingungen, Proben- und Reagenzienkontext, Fehlerbeschreibung sowie Fotos oder Videos bereitstellen.
Häufig gestellte Fragen
1. Welches Messprinzip verwendet YEX-L1-BOD?
Das Gerät arbeitet mit Druckdifferenz im geschlossenen Gefäß und CO2-Absorption. Mikroorganismen verbrauchen Sauerstoff, Kopfraumsauerstoff ergänzt die Flüssigkeit, Natriumhydroxid bindet das CO2 und das Terminal rechnet den Druckabfall in BSB um. Gültige Ergebnisse erfordern korrekte Probenvorbereitung, Dichtung, Rühren, Temperatur und Qualitätssicherung.
2. Welche Bereiche und welcher Probendurchsatz sind möglich?
Der Arbeitsbereich ist 0–4000 mg/L mit acht Volumeneinstellungen; bis zu sechs Proben laufen gleichzeitig. Je nach Erwartungswert werden 500, 450, 400, 300, 200, 100, 50 oder 25 mL gewählt und exakt eingegeben. Über 4000 mg/L ist eine validierte Verdünnung erforderlich.
3. Misst das Gerät BSB5 direkt?
Das System führt einen programmierten BSB-Test aus und zeigt während der Inkubation den druckbasierten BSB an. Für BSB5 werden fünf Tage und 20 ± 1 °C im Dunkeln eingestellt. Die Gültigkeit hängt zusätzlich von Methode, Vorbereitung, Blindwerten, Impfung, Verdünnung, Korrekturen, Replikaten und Akzeptanzkriterien ab.
4. Wie wird die Genauigkeit geprüft?
Die Anleitung schreibt eine Glucose-Glutaminsäure-Kontrolle vor. Geimpfte GGA-Standardlösung wird parallel über fünf Tage geprüft; der Mittelwert soll 180–230 mg/L betragen. Bei Abweichung sind Temperatur, Impfung, Verdünnungswasser, Reagenzien, Dichtungen, Volumen, Einstellungen und Handhabung zu untersuchen.
5. Ist der Inkubator enthalten?
Nein. Das Labor stellt einen dunklen Inkubator bereit, der das komplette Rührsystem bei 20 ± 1 °C aufnimmt. Vor der Beschaffung sind Innenmaße, Kabelführung, Temperaturgleichmäßigkeit, Erholung nach Türöffnung und Überwachung zu prüfen. Routinemäßige Glasgeräte und Vorbereitungsgeräte werden ebenfalls gestellt, sofern nicht angeboten.
6. Wie werden Zwischen- und Verlaufsdaten gespeichert?
Das Terminal speichert während des Tests Zwischenwerte und anschließend das Endergebnis. Nur der letzte Detaildatensatz bleibt erhalten; BSB5-Ergebnisdaten können bis zu zehn Jahre gespeichert werden. Das Löschen ist endgültig, daher müssen benötigte Daten vorher nach dem Laborverfahren dokumentiert werden. Eine Standardschnittstelle ist nicht spezifiziert.
7. Welche Proben benötigen besondere Vorbehandlung?
Zu prüfen sind Industrieabwasser, chlorierter Ablauf, Werte über 4000 mg/L, toxische Matrices, nitrifikantenreicher Ablauf, Wasser mit geringer Leitfähigkeit, algen- oder partikelreiche Proben, eingefrorene Proben und Proben mit zu wenigen Mikroorganismen. Möglich sind Neutralisation, Entchlorung, Homogenisierung, Filtration, Nährstoffe, Puffer, Verdünnung, Impfung oder Allylthioharnstoff.
8. Welche Daten werden für ein Angebot benötigt?
Anzugeben sind Proben, BSB-Bereich, Methode, Dauer, Chargengröße, Arbeitslast, Inkubator, pH, Chlor, Verdünnung, Impfung, Nitrifikationskontrolle, Reagenzverbrauch, zusätzliche Flaschen oder Terminals, Stecker, Sprache, Zielort und Abnahme. YexSensor bestätigt daraus System, Reagenzien, Verbrauchsteile und Lieferumfang.
Zusammenfassung
YEX-L1-BOD eignet sich für Labore, die sechs parallele respirometrische BSB-Messungen von 0–4000 mg/L, 1–30 Tage, definierte Volumenfaktoren, Terminaldaten und GGA-Prozesskontrolle benötigen. Die Grenzen sind klar: Ein separater dunkler 20 ± 1 °C-Inkubator, richtige Probenbiologie und Vorbehandlung, dichte Flaschen, kontinuierliches Rühren und vollständige BSB-Qualitätssicherung bleiben erforderlich.
Für eine anwendungsgerechte Auslegung senden Sie YexSensor Probenarten, Bereich, Methode, Chargengröße, Dauer, Inkubation, Vorbehandlung, Reagenzplan, Ersatzteile, Zielort und Abnahmekriterien. Damit lassen sich Bereichsstrategie, Flaschen- und Terminalzahl, Reagenzien, nutzerseitige Ausrüstung, Packliste und Inbetriebnahme vor Versand bestätigen.
